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1. 概念:考馬斯亮藍染色是一種常用的蛋白質(zhì)染色方法。它利用亮藍G-250與蛋白質(zhì)之間的相互作用,使蛋白質(zhì)呈現(xiàn)出藍色,從而可以在凝膠中可視化蛋白質(zhì)。
2.分類:考馬斯亮藍染色主要有兩種類型:快速染色和傳統(tǒng)染色??焖偃旧梢栽?-2小時內(nèi)完成,但靈敏度較低;傳統(tǒng)染色需要更長的時間(通常一夜),但靈敏度更高。
3.實驗步驟:
(1) 蛋白質(zhì)電泳:首先,將蛋白質(zhì)樣本通過SDS-PAGE電泳進行分離,并根據(jù)蛋白質(zhì)的大小和電荷選擇合適的凝膠和電泳條件。
(2) 染色:電泳結(jié)束后,將凝膠從電泳槽中取出,放入含有亮藍G-250染色液的容器中。將容器放在搖床上搖動,使染色液均勻接觸到凝膠的每一部分。快速染色通常需要搖動1小時,傳統(tǒng)染色則需要搖動一夜。
(3) 去染:染色后,將凝膠從染色液中取出,放入去染液中。同樣地,將容器放在搖床上搖動,使去染液能夠均勻接觸到凝膠的每一部分。去染的目的是去除多余的染色液,使背景清晰??焖偃ト就ǔP枰獡u動30分鐘至1小時,傳統(tǒng)去染則需要搖動2-3小時,或者直到蛋白質(zhì)條帶清晰可見。
(4) 觀察和記錄結(jié)果:將凝膠放在顯微鏡下觀察結(jié)果。如果需要,可以使用相機或者掃描儀記錄結(jié)果。
4.常用試劑配方:
染色液配方:
● 亮藍G-250:0.1%(w/v)
● 甲醇:50%(v/v)
● 醋酸:10%(v/v)
● 去離子水:余量
操作步驟:先將亮藍G-250溶解在甲醇中,然后加入醋酸,最后加入去離子水,調(diào)整到最終體積。
去染液配方:
● 甲醇:40%(v/v)
● 醋酸:10%(v/v)
● 去離子水:余量
操作步驟:先將甲醇和醋酸混合,然后加入去離子水,調(diào)整到最終體積。
注意,這些配方可能需要根據(jù)實驗的具體條件和需求進行調(diào)整。例如,如果染色效果不好,可能需要增加亮藍G-250的濃度;如果背景太深,可能需要增加去染液中甲醇的濃度。
5.常見問題和解決措施:
● 染色效果不好:如果染色效果不好,可能是染色時間不夠,或者染色液的配制不正確。解決方法是延長染色時間,或者檢查染色液的配制,確保亮藍G-250的濃度和pH值都在正確的范圍內(nèi)。
● 背景太深:如果背景太深,可能是去染不充分。解決方法是增加去染的時間,或者更換新鮮的去染液。
● 觀察不到蛋白質(zhì)條帶:如果觀察不到蛋白質(zhì)條帶,可能是蛋白質(zhì)的濃度太低,或者電泳條件不合適。解決方法是增加樣本的蛋白質(zhì)濃度,或者優(yōu)化電泳條件,例如調(diào)整電泳電壓或者電泳時間。
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